植物基因组DNA纯化试剂盒
(离心柱型)
目录号:GF2368
产品内容
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产品组成 |
GF2368 / (20 preps) |
GF2368 / (100 preps) |
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溶液GS1 (Buffer GS1) |
10 ml |
50 ml |
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溶液GS2 (Buffer GS2) |
0.28g(使用前先加1.2 ml 无菌水制备成溶液) |
1.4g(使用前先加6 ml 无菌水制备成溶液) |
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溶液GP (Buffer GP) |
4 ml |
20 ml |
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溶液BC (Buffer BC) |
6 ml(使用前先加入12 ml 无水乙醇) |
30 ml(使用前先加入60 ml无水乙醇) |
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RNase A (10 mg/ml) |
600μl |
1.5ml*2 |
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漂洗液PW (Buffer PW) |
6 ml(使用前先加入24 ml 无水乙醇) |
30 ml(使用前先加入120 ml无水乙醇) |
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洗脱缓冲液TB (Buffer TB) |
15ml |
30ml |
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过滤柱CS1 (Filtration Columns CS1) |
20个 |
100个 |
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吸附柱CG1 (Spin Columns CG1) |
20个 |
100个 |
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收集管(2 ml) (Collection Tubes) |
40个 |
200个 |
储存条件
该试剂盒置于室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,必要时可在37℃水浴中预热10min,以溶解沉淀。
产品简介及特点
本试剂盒采用特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲系统,能从多种植物组织中分离纯化高质量基因组DNA,独特的沉淀溶液可以沉淀去除多糖多酚植物样本中的蛋白质、多糖以及酚类等杂质。提取的基因组DNA纯度高,质量稳定可靠。
使用本试剂盒纯化的基因组DNA适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交、芯片检测、高通量测序等实验。
简便快捷:1h内即可获得高纯度的基因组DNA。
适用广泛:适用于多种植物组织,包括多糖多酚植物。
安全无毒:无需苯酚/氯仿等有毒有机试剂。
超纯高效:高效获得高纯度的DNA,可直接用于PCR、酶切、杂交等分子生物学实验。
注意事项
1.样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
2.若溶液GS1或溶液BC中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。
事前准备:
1.溶液GS2制备:按照比例将无菌水加入到GS2浓缩液粉末中,旋涡1min,50℃孵育至完全溶解,得溶液GS2。制备好的溶液GS2长期保存需要储存在4℃。
2.向溶液BC中加入相应体积的无水乙醇,混匀,室温保存。
3.向漂洗液PW中加入相应体积的无水乙醇,混匀,室温保存。
操作步骤
使用前请先在溶液BC和漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。
1.取植物新鲜组织约100mg或干重组织约30mg,加入液氮充分碾磨。
注意:使用超过推荐量的样品可能堵塞吸附柱,降低回收率和质量。
2.立即将研磨好的粉末迅速转移至1.5ml微量离心管中,并添加360μl溶液GS1、40μl制备好的溶液GS2和25μl RNase A溶液,迅速涡旋混匀。
注意:不要预先混合这些溶液。
注意:为了获得最佳产量,彻底研磨组织,不充分研磨的组织中的DNA可能无法被试剂接触到;为了得到完整的DNA,新鲜组织应在液氮中迅速冷冻并存储在-80℃中。
3.将离心管放在65℃水浴20min,水浴过程中颠倒离心管以混合样品数次。
4.加入130μl溶液GP,涡旋振荡1min,混匀后将离心管置于冰上静置5min,然后12,000rpm(~13,400×g)离心5min。
5.转移上清至过滤柱CS1中(过滤柱CS1放在收集管中),12,000rpm(~13,400×g)离心2min,转移滤液至新的离心管中。
6.向滤液中加入1.5倍体积的“溶液BC(使用前请检查是否已加入无水乙醇)”,充分混匀,此时可能会出现絮状沉淀,但不影响后续DNA的纯化。
例如:对于500μl滤液,加入750μl溶液BC(使用前请检查是否已加入无水乙醇)
7.将上一步所得溶液和絮状沉淀“分次”转移到吸附柱CG1中(吸附柱CG1放在收集管中),12,000rpm (~13,400×g)离心1min,倒掉废液,将吸附柱CG1放入收集管中。
8.向吸附柱CG1中加入700μl漂洗液PW(使用前请检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm(~13,400×g)离心1min,丢弃废液,将吸附柱CG1放入收集管中。
9.重复操作步骤8。
10.将吸附柱CG1放回收集管中,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,弃收集管,然后将吸附柱CG1转移到新的离心管中,室温晾干5-10min。
注意:乙醇残留会抑制后续的酶反应,所以晾干时要确保乙醇挥发干净,但也不要干燥太长时间,以免难以洗脱DNA。
11.在吸附柱CG1中加入50-200μl洗脱缓冲液TB,室温放置3-5min,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,将溶液收集到离心管中。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于50μl,体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率;且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为增加基因组DNA的得率,可将离心得到的溶液再加入吸附柱CG1中,室温放置2min,12,000rpm (~13,400×g)离心2min。

